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文檔簡介
1、研究目的: 因IFN-τ僅在特定的時(shí)間、空間才會表達(dá),并且直接組織培養(yǎng)和提取也很繁瑣和復(fù)雜。所以,本實(shí)驗(yàn)擬采用基因工程技術(shù),將克隆的oIFN-τ(綿羊IFN-τ)τ片段轉(zhuǎn)入大腸桿菌,使oIFN-τ成熟肽在大腸桿菌中得到高效表達(dá),并探索簡單有效的roIFN-τ(recombinantovineinterferon-tau,重組綿羊IFN-τ)純化、復(fù)性方法,獲得高純度高活性的roIFN-τ。為今后大規(guī)模生產(chǎn)奠定基礎(chǔ)。 研究
2、方法: ■載體構(gòu)建與目的蛋白的誘導(dǎo)表達(dá) (1)PCR法擴(kuò)增oIFN-τ完整成熟肽編碼基因。 (2)構(gòu)建oIFN-τ/pBV220/E.coliBL21工程菌。 (3)升溫誘導(dǎo)oIFN-τ表達(dá);超聲裂解確定目的蛋白的表達(dá)方式及最佳表達(dá)時(shí)間。 (4)蛋白N端測序鑒定目的蛋白。 ■roIFN-τ的發(fā)酵表達(dá)與純化復(fù)性 (1)上發(fā)酵罐,培養(yǎng)工程菌并升溫誘導(dǎo)oIFN-τ的表達(dá)。 (2)
3、超聲裂解菌體獲取包涵體,洗液洗滌后以8M尿素變性溶解。 (3)對變性溶解的包涵體蛋白以硫酸銨沉淀法粗純化,對所獲硫酸銨沉淀以包涵體溶解液洗滌的方法進(jìn)一步去除雜蛋白。 (4)初純化后的包涵體梯度透析復(fù)性。 (5)DEAE-FF陰離子交換柱對復(fù)性后蛋白進(jìn)行再次純化。 ■重組IFN-τ的活性測定 MTF法測定roIFN-τ比活性。 研究結(jié)果: ■載體構(gòu)建與目的蛋白的誘導(dǎo)表達(dá) (1
4、)對基因的修飾和改造使roIFN-τ成熟肽在大腸桿菌中成功表達(dá),目的蛋白占菌體總蛋白量的約20%。 (2)確定了roIFN-τ以包涵體方式表達(dá),誘導(dǎo)后4h為最佳表達(dá)時(shí)間。 ■roIFN-τ的發(fā)酵表達(dá)與純化復(fù)性 (1)裂解菌體,獲取包涵體沉淀,并洗滌,Bandscan軟件測定目的蛋白占菌體總蛋白量由約20%升至33%。 (2)以45%百分飽和度的硫酸銨沉淀蛋白液,取沉淀,目的蛋白含量升至44.1%,對所獲沉
5、淀以包涵體溶解液洗滌的辦法重復(fù)3次,目的蛋白百分比依次升至58.6%、67.0%和86.3%。 (3)4℃條件下,進(jìn)行梯度透析,發(fā)現(xiàn)很少沉淀形成 (4)對復(fù)性后的蛋白進(jìn)行DEAE-FF柱純化,純度又得到大幅提高。得到純度>95%的roIFN-τ。 ■重組IFN-τ的活性測定 MTT法測定復(fù)性后roIFN-τ的標(biāo)準(zhǔn)效價(jià)為2.09×107IU/mL,比活性為2.35×107IU/mg。 結(jié)論:
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